核酸分子杂交.ppt
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1、核酸分子杂交定义 具有一定互补序列的核苷酸单链在液相或固相中按碱基互补配对原则缔合成异质双链的过程叫核酸分子杂交。种类按反应支持物可分为固相杂交和液相杂交两种:固相杂交应用较广,包括Southern blot、Northern blot、Spot blot、in situ hybridization等。DNA HybridizationDe-and re-nature DNA DS using temperature variation一.核酸探针制备及标记v核酸探针(probe)是指能与特定核酸序列发生特异性互补的已知核酸片段,因而可检测样品中特定的基因序列。探针v根据核酸探针的来源及性质有
2、双链DNA、单链DNA、单链RNA和人工合成的寡核苷酸探针等。用于分子杂交的核酸探针均须进行标记,带有示踪物,与靶基因杂交后,才能检测显示出杂交体信号。标记物有放射性同位素和非放射性同位素两大类。3H、35S和32P是三种较常用的放射性同位素标记物,非放射性同位素标记物较常用的是生物素(biotin)、地高辛(digoxigenin,DIG)和荧光素等。(一)缺口平移标记法(Nick translation)v原理v在未标记的DNA探针溶液中加入一定量的胰DNA酶(DNase),DNA聚合酶和标记的三磷酸核苷。DNase在DNA双链上随机切开若干个带有3-OH末端的单链缺口,而DNA聚合酶发挥
3、53核酸外切酶活性从5-末端标记v切除单核苷酸;同时又具有从53的聚合作用,将标记的三磷酸核苷按53方向重新修补缺口,此新合成DNA的两条链均匀地被掺人标记物。该法适合于各种环状或线性双链DNA探针标记。标记v试剂v1.10缺口平移缓冲液v0.5mol/LTris-Cl(pH7.2)vv0.1mol/LMgSO4vv1.0mmol/L二硫苏糖醇(DTT)vv500g/ml牛血清白蛋白(BSA)v标记v2.未标记脱氧三磷酸核苷(dNTP)溶液:dTTP、dCTP、dGTP溶于50mmol/LTris-Cl(pH7.2),终浓度为20mmol/L。v3.DNase(10ng/ml):溶于含50g/
4、mlBSA、1mmol/LDTT、50%(V/V)乙二醇的溶液。v4.DNA聚合酶(5U/l):溶于50mmol/LTris-Cl(pH7.2)。v5.-32PdATP:3000Ci/mmol、10Ci/l。操作步骤v1.加样:冰浴下依次加入下列试剂并混匀:v10缺口平移缓冲液2.5lv未标记的dNTP混合液1.0lvDNA(0.51g)5.0lv-32PdATP5.0lvDNase(振荡混匀)2.5lvDNA聚合酶(振荡混匀)0.5lv双蒸去离子水至体积25l操作步骤v2.反应:于1416水浴23小时。加1l0.5mol/LEDTA(pH8.0)终止反应。v3.分离:标记完毕的反应液加至TE
5、缓冲液平衡的SephadexG-50柱上(柱床体积为0.730mm)。加样完毕后,用TE缓冲液洗脱,分管收集洗脱液,每管约200l。再每管取5l点样于滤纸上液闪计数。主峰为纯化的标记探针,尾峰为未被结合的游离标记核苷酸。将主峰部分收集,20储存。v操作步骤v4.结合率的计算:vv主峰计数(CPM)v结合率=x100%v主峰计数(CPM)+尾峰计数(CPM)vv一般结合率在2030%。(二)5末端标记法v原理vDNA5末端的磷酸根,用碱性磷酸酶去磷酸化,再用T4多核苷酸激酶将-32PATP的-32P转移到DNA5端的羟基上。试剂v1.5T4多核苷酸激酶缓冲液v0.5mol/LTris-Cl(pH
6、7.6)v0.1mol/LMgCl2v50mmol/LDTTv1mmol/L精脒(Spermidine)v2.T4多核苷酸激酶溶液(1U/l)v3.碱性磷酸酶(25U/ml)操作步骤v1.DNA去磷酸化:在Eppendorf管内加5lDNA,25l50mmol/LTris-Cl(pH8.0)和20l碱性磷酸酶,37反应3060分钟。然后用酸变性碱性磷酸酶,用乙醚提取。再加1/10体积3.0mol/L醋酸钠,用乙醇沉淀。v2.将0.1mCi-32PATP放入小离心管,冻干。v3.转32P到DNA上:在含有-32PATP的小离心管内,依次加入38l去磷酸的DNA,10l多核苷酸激酶缓冲液,3l多核
7、苷酸激酶,在37反应3040分钟。v4.分离:加等体积饱和酚,离心510分钟后,取上清液到另一个小离心管内,再加500l乙醚,混匀,离心,弃去上层含有残留酚溶液,加1/10体积3.0mol/L醋酸钠。然后加双倍体积冷乙醇混合在-70中15分钟,或-20中2小时,沉淀DNA。操作步骤(三)随机引物标记法v原理v随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成,其长度为6个核苷酸。标记的方法是将双链DNA变性成单链DNA,再与随机引物退火杂交,在四种脱氧三磷酸核苷存在下,由大DNA聚合酶大片段(Klenow片段)催化,从引物的3末端开始按53方向合成与模
8、板DNA互补的DNA链,如有-32PdNTP或其他示踪物的掺人,就可产生标记的DNA探针。原理v随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成,其长度为6个核苷酸。标记的方法是将双链DNA变性成单链DNA,再与随机引物退火杂交,在四种脱氧三磷酸核苷存在下,由大DNA聚合酶大片段(Klenow片段)催化,从引物的3末端开始按53方向合成与模板DNA互补的DNA链,如有-32PdNTP或其他示踪物的掺人,就可产生标记的DNA探针。操作步骤v1.在Eppendorf管中,将TE溶解的30100ng纯化的双链DNA与15ng随机引物混合(总体积不超过14l
9、),置沸水中变性3分钟,再立即置冰浴中冷却;v2.迅速离心10秒,使溶液聚集于试管底部,冰浴中放置;3.冰浴中在一微量离心管中依次加入下列试剂并混匀:v10Klenow缓冲液2.5lv10dNTP2.5lvKlenow片段1.0lv-32PdCTP5.0lv4.将上述混合液加入到变性模板DNA随机引物溶液中。v5室温放置3小时以上。操作步骤v6加1l0.5mol/LEDTA(pH8.0)终止反应,并用TE缓冲液稀释反应液至100l,20保存备用。操作步骤(四)光化生物素法v原理v光化生物素是一种化学合成的生物素衍生物,分子中含有可光照活化的叠氮代硝苯基,生成活泼N基团,后者易与DNA或RNA中
10、的伯胺基发生结合反应,生成光化生物素标记核酸探针。v材料v1.光化生物素:在暗室中用灭菌双蒸水配成1mg/ml,分装后,避光下20可稳定保存46个月。v2.正丁醇或仲丁醇v3.特种光源:LYQ12-100卤钨灯操作步骤v1.暗室安全灯下,在Eppendorf管中加入125g待标记核酸(0.51.0g/mlDNA或RNA),两倍量的光化生物素(即250g),补水至50l。将反应管敞开插入冰模中,距卤钨灯光源10cm,强光照射30分钟。加100lTE缓冲液。此后操作在正常光线下。v2.加100l正丁醇(或仲丁醇),抽提两次,去上层正丁醇;v3.加1/10体积3mol/L醋酸钠(pH5.2)和2倍体
11、积冷无水乙醇,混匀后置20过夜。v4.离心的沉淀经干燥后,溶于适量的0.1mol/LEDTA或灭菌双蒸水中,浓度为50g/ml,分装后20避光保存。操作步骤(五)DIG标记探针vDIG标记是德国BoehringerMannheim公司发展的一种非放射性标记方法。Digoxigenin-11dUTP可以通过随机引物标记结合到DNA探针或通过DNA体外转录标记到RNA探针,或通过3尾端标记结合到寡聚核苷酸探针。然后与抗地高辛抗体(antidigonigeninalkalinephosphatase)进行免疫反应,通过化学呈色检测。DIG标记法与前述同位素酶促标记法基本相同。二.斑点杂交v原理v将D
12、NA或RNA变性后直接点样吸附于固相支持滤膜上,然后用标记探针与之杂交,洗涤去除未反应探针,采用放射自显影或显色反应检测显示杂交信号,分析结果。v本节主要介绍用-32P标记DNA探针及光化生物素标记DNA探针检测DNA与RNA的斑点杂交方法。材料1 器材v同位素探测仪v自动光密度扫描仪v真空抽滤加样器vX光胶片盒(带增感屏)2.试剂v20SSC(3mol/LNaCl、0.3mol/L柠檬酸三钠):称取175.32gNaCl,加700ml双蒸水,充分溶解后,加88.2g柠檬酸三钠,溶解后加双蒸水至1000ml,8磅高压灭菌15分钟。v去离子甲酰胺:称取11g离子交换树脂(Bio-BadAG501
13、-X8,2025目)与110ml甲酰胺混合,室温下搅拌30分钟,用Waterman滤纸过滤2次,分装后20保存。v硫酸葡聚糖(1mg/ml):称取1mg硫酸葡聚糖干粉,溶于1ml灭菌水,20保存。v50Denhardt溶液(1%BSA、1%PVP-40、1%Ficoll-400):分别称取1gBSA,1gPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮),1gFicoll-400(水溶性聚蔗糖),用少量双蒸水溶解混合,加双蒸水至100ml。过滤除菌,20保存。2.试剂v变性鲑鱼精DNA(10mg/ml):称取鲑鱼精DNA(Sigma,型,钠盐)10mg放入灭菌管中,加入100mmol/LTris-HCl,5mmo
14、l/LEDTA缓冲液1ml,用超声波处理至液体透亮,完全溶解,分装后20保存。临用前置沸水浴中3分钟,然后迅速在冰浴中冷却。预杂交液中应含100g/mlDNA经变性并打断的鲑鱼精DNA。v 卵 白 素-碱 性 磷 酸 酶(A v i d i n-A K P,100U/100l):以0.4%TritonX-100PBS液配制。使用液中Avidin-AKP浓度为12U/1ml。2.试剂v底物缓冲液:100mmol/LTris-Cl(pH9.5)、1mol/LNaCl、5mmol/LMgCL2。v底物显色液v1)50mg/mlBCIP:10mgBCIP溶于200l二甲基酰胺。v2)75mg/mlNB
15、T:15mgNBT溶于200l70%二甲基酰胺(H2O配制)。v3)底物显色液:5ml底物缓冲液+10lBCIP+10lNBT2.试剂操作步骤v-32P标记DNA探针的斑点杂交v1.样膜的制备v(1)、核酸样品的预变性v所取DNA及RNA样品的量视情况而定,一般可加1020g。v1)DNA样品:样品DNA溶于水或TE缓冲液,置沸水浴510分钟,并于冰浴中迅速冷却,使其变性。v2)RNA样品:在Eppendorf管加入下列试剂:vRNA样品10lv20SSC2lv甲醛7lv甲酰胺20lv混匀置68温育15分钟,并迅速入冰浴中至少5分钟。操作步骤v(2)尼龙膜的预处理:戴上干净手套,取尼龙膜按需要
16、剪成合适大小,并剪掉一角作为点样顺序标记。如采用手工点样,用铅笔在尼龙膜上按0.81cm2的面积标上小格。用蒸馏水浸湿,再浸入6SSC溶液中至少30分钟,将膜取出自然凉干后待用。操作步骤(3)点样v可根据情况选用手工直接点样或用真空抽滤加样器点样。点样v1)手工直接点样:用微量移液器将经变性处理的核酸样品依次点到尼龙膜的标记点上。斑点直径不要过大,应控制在0.5cm2以内。单个样品分少量多次点样,边点样边风干。点样v2)斑点(狭缝)真空抽滤加样器点样:常规方法清洗加样器后,用0.1mol/LNaOH清洗点样器,灭菌三蒸水充分冲洗,如为RNA样品则还应用DEPC处理的水充分冲洗。将尼龙膜湿润后覆
17、盖在加样器支持垫上(或为预先湿润的滤纸),小心排除气泡,尼龙膜覆盖不到的部分需用Parafilm膜封闭;重新安装好加样器,接通真空泵。加样孔内加满10SSC,真空抽滤至所有液体被抽干;关闭真空泵,然后重复抽滤一次。点样v上述经预变性处理的样品中加入2倍体积20SSC,分别加至各孔,真空抽滤。待全部液体抽干后,再加10SSC抽滤两次。待10SSC抽干后再维持真空5分钟,使尼龙膜干燥。点样v(4)固定:点样后的样膜,置滤纸上,室温自然干燥,然后80烘烤2小时固定核酸样品。固定的样膜封存于塑料袋内待用(20可保存若干月)。2.预杂交v(1)配制预杂交液:终浓度为6SSC、50%去离子甲酰胺、5Den
18、hardt液、0.5mg/ml鲑鱼精DNA和0.5%SDS。v(2)将封存样膜的塑料袋剪一斜角开口,加少量的2SSC使其湿润,弃余液。按150200l/cm2膜,加入预杂交液,去除袋内气泡,熔封塑料袋斜角开口处。将此塑料袋置恒温摇床或杂交炉中,42温育24小时。3.杂交v(1)探针变性:-32P标记的探针如为双链DNA,则需经变性处理。将标记好的探针置沸水浴中5分钟,然后迅速置冰浴中。v(2)配制杂交液:终浓度为6SSC、50%去离子甲酰胺、5Denhardt液、0.1mg/ml鲑鱼精DNA、0.5%SDS和放射性同位素探针0.5ng/l。杂交v(3)杂交:从水浴中取出塑料袋,剪去一角,弃预杂
19、交液,加入杂交液(按80l/cm2膜)及-32P标记探针。小心排除气泡,重新封好口。为防止污染,应将塑料袋外再套另一塑料袋。将杂交袋置恒温摇床或杂交炉中,42温育1620小时。4.洗膜v杂交温育结束后,剪开杂交袋一角,将杂交液倒入放射性废物容器中,剪开袋取出膜,放进装有2SSC0.1%SDS的盘中,室温摇晃漂洗5分钟。根据需要选择不同方法洗膜,去除非特异性的同位素。洗膜v(1)高严谨性漂洗:依次按下列条件漂洗:v2SSC0.1%SDS室温,215分钟;v0.1SSC0.1%SDS室温,215分钟;v0.1SSC0.1%SDS55,215分钟;洗膜v(2)低严谨性漂洗:依次按下列条件漂洗:v6S
20、SC0.1%SDS室温,215分钟;v2SSC0.1%SDS室温,215分钟;v1SSC0.1%SDS55,215分钟。5.放射性自显影v样膜经漂洗后,置干净滤纸上,吸去膜上多余水分,外面裹一层保险膜。暗室安全灯下,在胶盒中压上2张X光胶片,样膜上下各1张,盖上胶片盒80放射自显影。时间视杂交强度而定,24小时10天不等。取出胶片盒,恢复至室温。按常规冲洗X光片:显影15分钟,停显1分钟,定影5分钟,流动水冲洗10分钟,自然干燥。6.结果观察v根据曝光点(或狭缝)的有无、强弱,可以判定目的基因的有无及量的多少。利用自动灰度扫描仪扫描曝光点(狭缝),计算积分光密度值,可以进行半定量分析。(二)光
21、敏生物素标记DNA探针的点杂交v1.样膜的制备v按-32P标记DNA探针的斑点杂交方法进行。v2.预杂交v按-32P标记DNA探针的斑点杂交方法进行。v预杂交液中各组份的终浓度为:5SSC、50%去离子甲酰胺、5Denhardt液、50mmol/LNa2HPO4(pH7.0)、5mmol/LEDTA、0.5mg/ml鲑鱼精DNA。3.杂交v(1)探针变性:将标记的光化生物素DNA探针加入0.5mlEppendorf管中,置沸水中510分钟,立即置于冰浴中,使保持单链状态。杂交v(2)配制杂交液:各组分终浓度为5SSC、50%去离子甲酰胺、1Denhardt液、20mmol/LNa2HPO4(p
22、H7.0)、5%硫酸葡聚糖、0.1mg/ml鲑鱼精DNA、光敏生物素标记DNA探针20100ng/ml组成。杂交v(3)杂交:参见-32P标记DNA探针的斑点杂交。4.洗膜v取出样膜置含2SSC0.1%SDS溶液中漂洗5分钟。再按下列条件洗膜:2SSC0.1%SDS100ml,室温,320分钟;0.1SSC0.1%SDS100ml,65,330分钟;将样膜置干净滤纸上,室温自然干燥,封入塑料袋内(不立即显色可存放于20至少1个月)。5.显色v(1)封闭:将3%BSA溶液加入塑料袋内,于42温育封闭1小时。显色v(2)酶联显色反应:弃封闭液,再加入适当稀释的Avidin-AKP,置室温1530分
23、钟,不时轻微振荡。随后依次按下列条件洗膜:100mmol/LTris-HCl(pH7.5)、1mol/LNaCl;100mmol/LTris-HCl(pH9.5)、1mol/LNaCl、5mmol/LMgCl2。将膜转入新塑料袋中,加入新配制的底物显色液,在暗环境中室温下显色,时间1560分钟。6.结果判定v出现蓝紫色斑点(狭缝)者为阳性,未着色为阴性。根据着色的深浅可以判定目的基因的多少。三.Sourthern印迹杂交v原理vSourthern印迹杂交是分析DNA的一种方法,从细胞或组织中提取高分子量的DNA,用一种或多种限制性内切酶消化,通过琼脂糖凝胶电泳按大小分离所得片段,从凝胶中按原来
24、位置和顺序吸印转移到固相支持膜(硝酸纤维素膜或尼龙膜)上,然后再与同位素或非同位素标记探针杂交,最后经放射自显影或显色反应进行检测。v以-32P标记DNA探针检测DNA为例,介绍Sourthern印迹杂交方法。材料v(一)器材v同位素探测仪v自动光密度扫描仪v真空核酸转移装置v紫外照相装置vX光胶片盒(带增感屏)vv(二)试剂及配制v1.0.2mol/LHClv2.变性液:0.5mol/LNaOHv1.5mol/LNaClv3.中和液:1mol/LTris-Cl(pH7.4)v1.5mol/LNaClv4、转移液:20SSC;或20SSPEv5、1mol/LTris-Cl(pH7.5)1.5m



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